X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸環(huán)己胺鹽(X-beta-D- glucuronide CHA salt)
——轉(zhuǎn)基因植物最常用報告基因GUS顯色底物,GUS染色定性研究
X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸環(huán)己胺鹽
NBS2004-100MG
NBS2004-1G
NBS2004-5G
品牌:NoninBio
作用機制:
X-Gluc,也稱為5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-beta-D-glucuronide(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸),是β-葡萄糖苷酶(β-glucuronidase,GUS)的顯色底物,由一種廣泛使用的報告基因gusA(uidA)所編碼。GUS水解X-Gluc,生成一種無色的葡萄糖醛酸和一種肉眼可見的氯-溴靛藍(chloro-bromoindigo)深藍色沉淀。利用這一特性,X-Gluc常用來檢測植物細胞和組織中的GUS表達;另外,X-Gluc還能用來檢測大腸桿菌引起的感染狀況;或檢測食物或水源是否受細菌污染。
主要應(yīng)用:轉(zhuǎn)基因植物報告基因GUS活性檢測,X-gluc用作顯色底物。
普遍應(yīng)用優(yōu)勢在于:絕大多數(shù)植物細胞內(nèi)不存在內(nèi)源性的GUS活性,而且GUS基因表達產(chǎn)物具有檢測方法簡單、靈敏度高,易于定量及定性分析,能夠與其他蛋白質(zhì)基因融合等優(yōu)勢,因此,GUS基因為植物工程研究中應(yīng)用最廣泛的報告基因(報道基因)之一。
1. GUS活性檢測(組織化學(xué)定位法,定性研究)
GUS催化底物X-gluc在酶活性位點生成深藍色沉淀,為研究外源基因在植物中表達具體部位研究提供很好的研究手段。且GUS酶和顯色產(chǎn)物非常穩(wěn)定,植物中可以積累。
1.1 GUS染色液制備【作為參考,可按照具體實驗條件來調(diào)整】
試劑名稱 | 配制方法 | 用量 | 備注說明 |
X-Gluc儲存液(10mg/ml) | 溶解1mg X-gluc于0.1ml甲醇,低速漩渦充分溶解; | 100μL | 最早實驗使用DMF作為X-gluc溶劑,但是有研究發(fā)現(xiàn)DMF會抑制GUS活性,使用甲醇作為溶劑可將GUS活性提高25%。 |
2x buffer | 磷酸鹽緩沖液pH 7.0 (0.1 M NaH2PO4/0.1 M Na2HPO4); 檸檬酸-鹽酸溶液pH 7.0 (0.1 M sodium citrate/ 0.2 N HCl); | 1ml | 體外X-gluc活性(熒光定量染色)顯示,使用檸檬酸鹽酸溶液可將GUS活性提高20%。 |
0.1 M potassium ferrocyanide | 將4.2239g亞鐵氰化鉀溶于水,定容至100ml。 | 20 μL | 亞鐵-/鐵-氰化鉀的最佳工作濃度需要摸索,建議最好起始工作濃度為1 mM。 |
0.1 M potassium ferricyanide | 將3.2924g鐵氰化鉀溶于水,定容至100ml。 | 20 μL | |
10% Triton X-100 | 10 μL | ||
H2O | 850μL |
1.2 GUS定性染色步驟
a)于預(yù)冷固定液(4%多聚甲醛溶液,新鮮制備)固定樣本30min,偶爾搖晃或置于低速搖床上固定;
b)使用預(yù)冷的1×磷酸鹽或檸檬酸鹽酸溶液清洗固定樣本30-60min,中間更換幾次清洗液;
c) 真空滲透法將X-Gluc染色液加入待染色樣本【對于組織培養(yǎng)的擬南芥不需用真空滲透;】黑暗條件室溫或者37°C孵育幾小時或過夜,或者明顯的藍色沉淀出現(xiàn)(不超過24h);
d)去離子清洗染色樣本;
e) 對于綠色樣本,使用70%乙醇脫色直到葉綠體完全去除,然后轉(zhuǎn)移到去離子水內(nèi)清洗;對于種子或其他樣本,參考文獻An Improved Clearing Method for GUS Assay inArabidopsis Endosperm and Seeds的替代方法;
f) 肉眼或顯微鏡下觀察,白色背景上的藍色小點即為GUS表達位點。
2. GUS活性檢測(熒光分析法,定量研究)
GUS催化熒光底物MUG 4-甲基傘型酮-beta-D-葡糖苷酸,將其水解為4-MU(4-甲基傘型酮)和β-D-葡萄糖醛酸。4-MU中的羥基解離后在365nm的光激發(fā)下產(chǎn)生455nm的熒光。此時用熒光分光光度計測定得到的是相對值,因此同時需要用標準物4-MU進行校準。
熒光定量分析GUS活性有兩種基本方法:
1)在一個時間點測定GUS酶作用產(chǎn)物的總熒光量,需要設(shè)定空白對照,以消除內(nèi)源熒光強度;
2)測定一段時間內(nèi)GUS的動力學(xué)過程。在酶反應(yīng)初始階段,酶作用產(chǎn)物與時間呈線性關(guān)系,而內(nèi)源性熒光物質(zhì)的熒光量與時間無線性關(guān)系。由此可計算GUS酶活力。GUS酶活性通常以μg MU/min/mg蛋白質(zhì)。有時也可以用樣本的鮮重來表示。
2.1 檢測步驟【僅作參考,根據(jù)具體實驗條件做適當調(diào)整】
a)取約100mg愈傷組織或一片新鮮葉盤于1.5ml離心管內(nèi),加入100μl萃取緩沖液(extraction buffer)內(nèi)勻漿??杉尤肷倭可匙踊虿Aе樘岣哐心バ省?/p>
萃取緩沖液(extraction buffer)配方:50mM磷酸鹽緩沖液(pH 7.0),10mM DTT,1mM Na2EDTA,0.1%十二烷基肌氨酸,0.1% Triton X-100
b)4°C,15,000rpm離心5min。收集上清轉(zhuǎn)移到另一干凈的1.5ml離心管,冰上放置待用。
c) 取50μl上述萃取上清到0.5ml 37°C預(yù)熱的反應(yīng)緩沖液(Assay buffer);用移液槍吹勻或漩渦混勻。
反應(yīng)緩沖液(Assay Buffer):稱取17.6mg MUG溶于50ml萃取緩沖液,此時即為1mM MUG反應(yīng)液。4°C保存,2周穩(wěn)定。
d)在某一時間段內(nèi)(高GUS活性樣本30min;或低GUS活性1h-過夜;)吸取100μl溶液到含900μl終止液(Stop Buffer)的1.5ml離心管內(nèi),做好標記。有可能采集3-4個時間點和過夜孵育的時間點熒光量?!居脽晒夥止夤舛扔嬙诩ぐl(fā)波長365nm、發(fā)射波長455nm下,狹縫10nm時測定不同時間點的熒光強度值?!?/p>
e)以熒光強度值對反應(yīng)時間作曲線,求出單位時間的熒光強度變化。用單位時間的熒光強度變化除以參加反應(yīng)的蛋白量,求出單位質(zhì)量的蛋白單位時間的熒光強度變化。
基本特性:
1)CAS NO:114162-64-0
2)英文同義名:5-bromo-4-chloro-3-indolyl-beta-D-glucuronic acid, cyclohexylammonium salt;X-beta-D- glucuronide CHA salt;X-Gluc CHA Salt; X-glu CHA Salt; X-glcA CHA Salt; BCIG CHA Salt;
3)分子式:C14H13BrClNO7 ? C6H13N
4)分子量:521.79g/mol
5)純度:>99%(HPLC)
6)外觀:白色至類白色結(jié)晶性粉末
7)溶解性:DMF、甲醇
8)化學(xué)結(jié)構(gòu)式:
產(chǎn)品訂購:
貨號 | 產(chǎn)品名稱 | 規(guī)格 | 價格(元) | 貨期 |
NBS2004-100MG | X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸環(huán)己胺鹽 | 100mg | 330 | 現(xiàn)貨 |
NBS2004-1G | X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸環(huán)己胺鹽 | 1g | 1600 | 現(xiàn)貨 |
NBS2004-5G | X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸環(huán)己胺鹽 | 5×1g | 7000 | 現(xiàn)貨 |