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干貨 | DNA 在瓊脂糖凝膠中的遷移速率受哪些因素影響?

欄目:技術(shù)支持
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跑電泳是分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)的一項(xiàng)基本技術(shù)。而瓊脂糖凝膠電泳作為生物學(xué)實(shí)驗(yàn)中最常用的技術(shù)之一,其主要特點(diǎn)有哪些?DNA 在瓊脂糖凝膠中的遷移速率又受什么因素影響呢?


今天,就來(lái)為大家做詳細(xì)的解讀與探討!準(zhǔn)備好迎接滿滿的干貨吧~

瓊脂糖凝膠電泳


瓊脂糖作為凝膠電泳常用支持物,其純度會(huì)直接影響DNA的分辨能力及電泳結(jié)果的清晰度。

MonTrack? Agarose瓊脂糖是標(biāo)準(zhǔn)熔點(diǎn)瓊脂糖,專為常規(guī)分離分析而設(shè)計(jì),可分離50~15,000 bp范圍內(nèi)的DNA和RNA 片段。

MonTrack? High Gel Strength Agarose與高純度瓊脂糖相比,分離范圍相同,硬度提高33%,制膠厚度低至3~4mm時(shí)仍能夠保持凝膠的完整性。


高純度瓊脂糖(ME00101) /高硬度瓊脂糖(ME00201)


我們知道,瓊脂糖凝膠電泳是常用的用于分離、鑒定 DNA、RNA 的方法,這種

電泳方法以瓊脂凝膠作為支持物,利用 DNA 分子在泳動(dòng)時(shí)的電荷效應(yīng)和分子篩效應(yīng),達(dá)到分離混合物的目的。
DNA 分子在高于其等電點(diǎn)的溶液中帶負(fù)電,在電場(chǎng)中向陽(yáng)極移動(dòng)。在一定的電場(chǎng)強(qiáng)度下,DNA 分子的遷移速度取決于分子篩效應(yīng),即分子本身的大小和構(gòu)型是主要的影響因素。DNA 分子的遷移速度與其相對(duì)分子量成反比。
不同構(gòu)型的 DNA 分子的遷移速度不同。如環(huán)形 DNA 分子樣品,其中有三種構(gòu)型的分子:共價(jià)閉合環(huán)狀的超螺旋分子(cccDNA)、開環(huán)分子(ocDNA)、和線形 DNA 分子(IDNA)。這三種不同構(gòu)型分子進(jìn)行電泳時(shí)的遷移速度大小順序?yàn)椋?/span>cccDNAIDNAocDNA
核酸分子是兩性解離分子,pH 3.5 是堿基上的氨基解離,而三個(gè)磷酸基團(tuán)中只有一個(gè)磷酸解離,所以分子帶正電,在電場(chǎng)中向負(fù)極泳動(dòng);而 pH 8.0-8.3 時(shí),堿基幾乎不解離,而磷酸基團(tuán)解離,所以核酸分子帶負(fù)電,在電場(chǎng)中向正極泳動(dòng)。不同的核酸分子的電荷密度大致相同,因此對(duì)遷移速率影響不大。在中性或堿性時(shí),單鏈 DNA 與等長(zhǎng)的雙鏈 DNA 的遷移速率大致相同。

那么,DNA在瓊脂糖凝膠中的遷移速率會(huì)受哪些因素影響呢?



DNA 在瓊脂糖凝膠中的遷移速率:

影響因素有哪些?



1

通過(guò)凝膠的電流

根據(jù)歐姆定律 V = IR 式中V 是電壓I 是電流(單位安培)R 是電阻(單位歐姆)。因?yàn)橛糜陔娪镜木彌_液通常是微堿性的(pH 7.8~8.0),通過(guò)凝膠的 DNA 分子攜帶負(fù)電荷,并以所施加的電流形成的速率向陽(yáng)極遷移。


2

DNA 分子的大小

雙鏈 DNA 分子在凝膠基質(zhì)遷移的速率與其堿基對(duì)數(shù)的常用對(duì)數(shù)( log10 )成反比(Helling et al. 1974)。大分子 DNA 摩擦阻力大,通過(guò)凝膠孔徑的效率低于小分子 DNA ,因此遷移速率慢。


3

瓊脂糖濃度

瓊脂糖凝膠是由氫鍵和疏水作用聚合在一起的多孔膠體。在電流的作用下,DNA 線性分子通過(guò)一系列孔徑泳動(dòng),這些孔徑的有效直徑取決于凝膠中瓊脂糖的濃度(如下圖所示)。

DNA 電泳遷移率(μ)的對(duì)數(shù)和凝膠濃度 (ι) 之間存在線性關(guān)系,這種相關(guān)性可以用方程式來(lái)表示:
logμ= logμ0-K
式中, μ0  DNA 自由電泳遷移率, Kr 是阻滯系數(shù),是一個(gè)與凝膠性質(zhì)、遷移分子大小和形狀相關(guān)的常數(shù)。


4

DNA 的構(gòu)象

超螺旋環(huán)狀(型)、切口環(huán)狀( 型)和線性( 型) DNA 在瓊脂糖凝膠中遷移速率不同(Thorne 1996,1967)。

上述三種類型 DNA 的相對(duì)遷移率主要取決于瓊脂糖凝膠的濃度和類型,但是同時(shí),電流強(qiáng)度、緩沖液離子強(qiáng)度、以及型超螺旋 DNA 的絞緊程度或密度也都影響相對(duì)遷移率( Johnson and Grossman 1977)。
在一些條件下, DNA    DNA 遷移得更快;在另一些條件下,順序可能顛倒。絕大多數(shù)情況下,區(qū)分不同構(gòu)象 DNA 的最佳方式是在電泳系統(tǒng)中加入未處理的環(huán)狀 DNA 樣品和在單一限制酶切位點(diǎn)經(jīng)酶切消化后的同一線狀 DNA 樣品。


5

凝膠和電泳緩沖液中的染料

染料插入雙鏈 DNA 造成其負(fù)電荷減少,而剛性和長(zhǎng)度增加。因此,線狀 DNA-染料復(fù)合物在凝膠中的遷移率約降低15% Sharp et al.1975)。


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6

施加電壓

低電壓時(shí),線狀 DNA 片段遷移率與所用的電壓成正比。但是,電場(chǎng)強(qiáng)度升高時(shí),高分子質(zhì)量 DNA 片段的遷移率不成比例增加。所以,當(dāng)電壓增大時(shí),瓊脂糖凝膠分離的有效范圍反而減小。要獲得大于2kb DNA 片段的良好分辨率,則所用電壓不應(yīng)高于5~8 V/cm。


7

瓊脂糖種類

常見的瓊脂糖主要有兩種:標(biāo)準(zhǔn)瓊脂糖和低熔點(diǎn)瓊脂糖( Kirkpatrick 1990),正在研制的第三種是熔點(diǎn)和凝點(diǎn)介于上述二者之間的瓊脂糖,它兼有兩者的特性。



8

電泳緩沖液

DNA 的泳動(dòng)受電泳緩沖液的組成和離子強(qiáng)度的影響。缺乏離子(如用水替代電冰槽及凝膠中的緩沖液)則電導(dǎo)率降至很低。DNA 遷移極慢,或者完全不動(dòng)。高離子強(qiáng)度時(shí),如錯(cuò)用了10×電泳緩沖液,電導(dǎo)率升高,即使應(yīng)用適中的電壓也會(huì)產(chǎn)生大量的熱量。最嚴(yán)重時(shí)凝膠會(huì)熔化,DNA 會(huì)變性。



如何選擇電泳緩沖液


 

有幾種緩沖液適用于天然雙鏈 DNA 的電泳,它們包括 Tris -乙酸鹽和 EDTA 緩沖液(pH 8.0, TAE ,也稱為 E 緩沖液)、Tris -硼酸鹽和 EDTA 電泳緩沖液( TBE )或 Tris -磷酸鹽和 EDTA 電泳緩沖液(TPE ),工作濃度約50mmol/ L ,pH 7.5~7.8。各種電泳緩沖液通常配制成濃溶液于溫室存放(見每種實(shí)驗(yàn)方案后的配方)。這些緩沖液都非常有效,選擇哪一種使用主要看個(gè)人工作習(xí)慣。

 

三者之中 TAE 的緩沖容量最低,如長(zhǎng)時(shí)間電泳會(huì)被消耗。此時(shí)凝膠的陽(yáng)極一側(cè)將發(fā)生酸性化,凝膠中向陽(yáng)極遷移的溴酚藍(lán)的顏色呈現(xiàn)從藍(lán)紫色到黃色的變化。該顏色變化從pH 4.6開始,到pH 3.0終止。定期更換緩沖液或調(diào)換兩個(gè)電極池的緩沖液可以防止 TAE 的消耗。TBE 和 TPE 比 TAE 花費(fèi)稍貴些,但是它們有高得多的緩沖容量。

 

雙鏈線狀 DNA 片段在 TAE 中比在 TBE 或 TPE 中遷移速率快10%左右。對(duì)于高分子質(zhì)量 DNA ,TAE 的分辨率高于 TBE 或 TPE ;對(duì)于低分子質(zhì)量 DNA ,TAE 要差些。此差別也許解釋下述現(xiàn)象:高度復(fù)雜混合物中的 DNA 片段,如哺乳類動(dòng)物 DNA ,用 TAE 電泳可有較高分辨率。因此,用于分析復(fù)雜基因組的 Southern 印跡( Southern blot )均用 TAE 作為電泳緩沖液制備凝膠和電泳。超螺旋 DNA 在 TAE 中的電泳分辨率要好于 TBE 。